注：本文为专业机构严谨实验数据，仅供学习交流。可通过本文数据来验证形形色色完全脱离宽体金线蛭食性的所谓中药“饲料”，植物“饲料”甚至放了鲜花的“饲料”是否科学。

人工养殖宽体金线蛭食性偏好初探

蔡银碧1，2 张孟1，2 梁月1，2 刘东1，2，3

( 1 上海海洋大学水产科学国家级实验教学示范中心，上海 201306; 2 海洋动物系统分类与进化）

摘 要: 为进一步了解宽体金线蛭的食性偏好，在室内养殖条件下，分别用螺( 环棱螺) 、鸭血、菲牛蛭配合饲料等3 种饲料投喂宽体金线蛭，并对其生长情况进行了对比。结果表明，在室内养殖的水温、pH、溶解氧近似的条件下，经过 129 d 养殖，投喂螺组宽体金线蛭的体质量呈上升趋势，平均体质量增长率为 247． 12% ，平均日增长 0． 04 g/d; 投喂鸭血组和配合饲料组宽体金线蛭的体质量均呈下降趋势，平均体质量增长率分别为 －50． 71% 和 －41． 71% 。试验表明，3 种饲料中，螺较适合作为宽体金线蛭的饲料，鸭血和菲牛蛭配合饲料则不适合作为其饲料。

关键词: 宽体金线蛭; 养殖; 饲料; 生长

宽体金线蛭( Whitmania pigra) 隶属于蛭纲 ( Hirudinea) ，无吻蛭目( Arhynchobdellida) ，黄蛭科( Haemopidae) ，金线蛭属( Whitmania) ，俗称蚂蟥，广泛分布于我国大部分地区的江河和湖泊，在国外主要分布于俄罗斯和日本^［1－2］。在我国民间，宽体金线蛭自古就被当作一味传统中药材，具有祛瘀消肿、逐恶散血、消炎解毒等功效。现代药理研究表明，宽体金线蛭的提取物中含有抗凝血的活性多肽，可用于外科手术以及心血管疾病、高脂血症、内科等疾病的治疗^［3］。近年来，市场上对宽体金线蛭产品的需求量越来越大，过度捕捞现象严重，再加上农药、化肥、工业废水等的无节制使用或排放，污染了宽体金线蛭的生境，致使野生宽体金线蛭的资源量日益枯竭。宽体金线蛭已于 1984 年被列入动物保护国际红皮书^［4］。开展宽体金线蛭人工养殖将有助于缓解市场供需矛盾，保护其自然资源。针对宽体金线蛭已发展了多种养殖模式，例如仿生态泥池养殖、网箱养殖和水泥池无土养殖等。随着养殖规模不断扩大，对宽体金线蛭饲料的需求也日趋紧迫。目前，人工养殖宽体金线蛭的常用饲料主要有螺蛳、螺蛳混合原生动物、蛋黄等^［5］。在实际生产中，上述饲料价格高，成本投入大，难以用于大规模、集约化的宽体金线蛭养殖。本试验在室内条件下进行了为期129 d的宽体金线蛭人工饲养研究，探讨宽体金线蛭的食性偏好和生长规律，以期为其人工养殖提供参考。

1 材料和方法

1． 1 材料

试验用宽体金线蛭购自上海市骆马湖渔场，选取体质量为 1． 0 ～4． 0 g、体表无伤痕、活性较强的 1 龄个体进行试验。

试验饲料选择螺、鸭血、菲牛蛭配合饲料等 3 种。螺为从当地河道中捕捞的环棱螺，于玻璃水缸内充气暂养。鸭血购自当地超市，为冰鲜产品，运回实验室后保存于 － 20 ℃ 冰箱。配合饲料参照李军等^［6］的菲牛蛭饲料配方配制，共配制饲料200 g，具体组成为: 血球蛋白粉( NP － 90) 0． 5% ，鱼粉 3% ，维生素 C 0． 05% ，复合维生素0． 02 g，氯化钠 1． 75 g，L － 精氨酸0． 04 g，中性蛋白酶 0． 01% ，粘粉 120 g。将上述所有原料放入玻璃器皿内，加纯净水至 200 mL，用玻璃棒搅拌均匀至果冻状，置于 4 ℃冰箱保存备用。

主要试验设备: 电子天平( AL104 型) ，便携式多参数水质分析仪( 哈希 HQ40d) ，玻璃缸( 60 cm ×30 cm ×36 cm) ，水泵( YEE －1102D) 。

1． 2 试验设计和管理

试验于 2017 年 6 月—11 月在室内玻璃缸中进行，为期 129 d。由于宽体金线蛭苗种大小不均，依照体质量大小将其分为 4 个规格: 1． 0 ～ 1． 5 g，12 尾; 1． 5 ～ 2． 0 g，6 尾; 2． 0 ～ 3． 0 g，7 尾; 3． 0 ～4． 0 g，5 尾。将上述 30 尾苗种混合于同一缸内进行饲养。

根据投喂饲料种类设置 3 个试验组: 螺组、鸭血组、菲牛蛭配合饲料组( 简称为配合饲料组) ，每组 1 个玻璃缸。螺组每 7 d 投喂 1 次; 鸭血组每 2 d 投喂 1 次; 配合饲料组每 2 d 投喂 1 次，每次投喂量为宽体金线蛭体质量的 2% 。投饲后第

2 天检查饲料剩余情况，保证所投饲料足量。

在室内常温条件下进行养殖管理。养殖水源为曝气 7 d 的自来水，玻璃缸内水深保持 20 cm。每 7 d 换水 1 次，每次更换 1 /2 的水体，及时清除剩余饲料。每 7 d 测量 1 次养殖水体的温度、pH、溶解氧等。每月至少随机抽样 1 次，每次称取 5 尾宽体金线蛭的体质量。

1． 3 数据分析

用 EXCEL 软件统计各试验组宽体金线蛭的平均初始体质量、平均终末体质量、最终存活数等生长指标数据，并参考程搏幸等^［7］的方法计算各组的平均体质量增长量、体质量增长率、存活率等。试验数据用( 平均值 ± 标准差) 表示。

平均体质量增长量( g) = 平均终末体质量 －平均初始体质量 ( 1) 体质量增长率( % ) = ( 平均终末体质量 － 平均初始体质量) /平均初始体质量 ×100 ( 2) 存活率( % ) = 最终存活数/30 ×100 ( 3)

2 结果

2． 1 不同饲料组宽体金线蛭的生长条件

试验过程中，7 月份水温较高，最高近 35 ℃， 11 月份水温较低，最低为 20 ℃，养殖水温基本处于宽体金线蛭的适宜生长温度范围( 20 ～ 30 ℃) 内。养殖开始时各组溶解氧均较低( 3． 0 ～ 3． 8 mg/L) ，随后鸭血组和配合饲料组的溶解氧逐渐升高，最高达到 6． 0 mg/L，而螺组始终维持在最初水平。试验过程中，水体 pH 为 7 ～8，各组变化均不明显。

2． 2 不同饲料组宽体金线蛭的生长情况

由图 1 可见，经 129 d 养殖，螺组宽体金线蛭的平均体质量呈上升趋势，由试验初始时的 2． 08 g增至结束时的 7． 22 g; 鸭血组、配合饲料组宽体金线蛭的平均体质量均呈下降趋势，由最初的2． 11 g 分别降至结束时的 1． 04 g 和 1． 23 g。

图1 投喂不同饲料对宽体金线蛭生长的影响

由表 1 可见，在 129 d 后，螺组宽体金线蛭的体质量平均增长( 5． 14 ± 1． 53) g，日增长 0． 04 g，增长率为 247． 12% ; 鸭血组和配合饲料组的体质量平均增长分别为( － 1． 07 ± 0． 45) g 和( － 0． 88 ±0． 36) g，日增长均为 － 0． 01 g。试验结果表明，从体质量增长情况看，螺较适合作为人工养殖宽体金线蛭的饲料，鸭血和配合饲料则不适合。

表1 不同饲料组宽体金线蛭的生长和存活状况

3 讨论

目前，有关宽体金线蛭的养殖技术、繁殖、分子标记、氨基酸含量测定和抗凝物质鉴定、温度对其生长的影响等方面已有广泛的研究^［8－15］。解决饲料问题对实现宽体金线蛭的人工规模化养殖十分重要，而目前有关宽体金线蛭饲料偏好，尤其是有关配合饲料对其生长影响的报道较少。

水环境对宽体金线蛭摄食和生长的影响较大^［16］。本试验中，各组养殖水体的 pH 变化均不明显，但溶解氧变化较大，螺组的溶解氧始终维持在较低水平( 3． 0 ～ 3． 8 mg/L) ，鸭血组和配合饲料组的溶解氧在试验中后期较高( 5． 0 ～ 6． 0 mg/ L) ，这可能是因为螺组摄食正常，活动量较大，消耗了水体中的溶氧，而另外两组宽体金线蛭由于不喜食鸭血或配合饲料，处于饥饿状态，活动量逐渐减少，因而水体溶解氧偏高。

试验过程中发现，宽体金线蛭的逃脱能力很强。由于没能及时发现其爬出水缸，造成部分个体死亡，导致本试验中宽体金线蛭的存活率偏低。因此，在养殖过程中，玻璃缸口周围须用细纱网封实以防止宽体金线蛭逃逸。此外，相较于鸭血组 ( 40． 00% ) 和配合饲料组( 46． 67% ) ，螺组宽体金线蛭的成活率偏低( 33． 33% ) ，这可能是因为螺组的个体在觅食时，钻入螺壳内吸食内脏团，螺受刺激后头足部和厣自然收缩，将幼蛭夹伤甚至夹死，导致存活率降低。

在自然环境中，宽体金线蛭主要以水中的螺蛳、河蚌、河蚬等软体动物为食^［1］。本试验尝试以菲牛蛭配合饲料^［6］投喂宽体金线蛭，如果可行，则有望突破目前人工养殖宽体金线蛭以螺蛳为饲料的限制，从而改变其养殖现状。然而，经过 4 个多月的室内养殖，配合饲料组宽体金线蛭的体质量呈现负增长，表明该饲料不适用于宽体金线蛭。这可能是因为菲牛蛭配合饲料中的血球蛋白粉仅对具有吸血习性的菲牛蛭有诱食作用，而对没有吸血习性的宽体金线蛭无效。同样，在试验中未观察到鸭血组宽体金线蛭的摄食行为，该组体质量亦表现为负增长，说明鸭血也不适合作为宽体金线蛭的饲料。上述情况说明，血制品不能作为宽体金线蛭的诱食成分。本试验中，螺组宽体金线蛭的体质量逐渐增加，说明作为一种活体饲料，螺可为宽体金线蛭提供足够的营养成分，促进其生长。这一结果与林小清等^［4］的研究结论一致。

李战福等^［5］建议，宽体金线蛭人工饲料配方的营养成分要与天然饲料相近。本试验的结果也证实了这一观点。在下一步的养殖试验中，可以尝试在饲料中添加剁碎的螺和原生动物以诱导宽体金线蛭觅食饲料，突破人工养殖的饲料瓶颈。

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